实验准备：实验开始前半小时，将培养基、PBS和胰酶在37°C下预热。照紫外光消毒所需的器材，包括2mL和10mL的移液管、15mL的离心管及WHB品牌的共聚焦爬片。

实验步骤：

1. 观察细胞状态

从培养箱中取出培养皿，使用显微镜观察细胞状态，包括细胞密度、形态和贴壁情况。

2. 清洗细胞

在超净台内，放入预热好的培养基、PBS和胰酶。点燃酒精灯，对培养皿口进行消毒，并吸走原培养基。

加入7mL的PBS（根据细胞状态适量调整），轻轻摇匀以清洗细胞。

3. 消化细胞

在观察到杂质洗去后，吸走PBS，加入3mL的胰酶，静置5分钟（时间和量可根据不同细胞进行调整），然后观察细胞是否被消化。

4. 终止消化

如果细胞已经消化，向底部加入7mL的培养基（根据细胞密度调整），终止消化过程，并用吸管轻轻吹打多次，以将残留的细胞吹打下来。均匀后取少量进行计数。

5. 稀释细胞

根据需要进行细胞稀释，当细胞悬液滴满共聚焦爬片表面后，将其放入培养箱中，静置约30分钟，待细胞附着后，再沿内壁添加培养基，继续培养。

6. 取出支架

细胞培养完成后，吸掉废液，用镊子夹住支架的一侧，轻松取出支架。

双手捏住支架两侧轻轻拉出爬片，继续后续的培养实验。

注意事项

1. 拿取培养皿时，确保液体不接触瓶口，每次打开瓶口时必须消毒。

2. 操作时，不要有其他物体经过开放的培养皿，以避免交叉污染。

3. 由于贴壁细胞的脆弱性，将其放入培养皿中的液体务必预热至37°C。

4. 取用共聚焦爬片时，保持其倾斜角度在30°以上，轻拉以防止爬片掉落或破裂。

5. 该产品为利来国际品牌的一次性产品，不能重复使用，爬片有正反面之分，拆开后立即使用。